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introduction
L'oignon est un des légumes cultivés dans l'histoire la plus ancienne. On pense que les ampoules de la famille des oignons ont été utilisés comme source de nourriture pour Millennia. Oignon est constituée de sa partie de plante herbacée et sa partie de bulbe comestible. Il est probablement originaire de feuilles sud-ouest Asie3 sont -vert .Les bleu et creux. Les ampoules sont grandes, charnue et ferme. Il y a trois principaux skinned4 blanc, rouge et violet varities- .La âcreté relative de l'oignon a des composants génétiques et environnementaux. Les composés soufrés dans les oignons ont également été montré pour être à la fois anti-inflammatoire en inhibant la formation de thromboxanes et en inhibant l'action du facteur d'activation des plaquettes (PAF). Thiosulfinates état des avantages anti-thrombotiques, y compris activité5 antioxydant, 6. réduit le cholestérol sérique et d'améliorer l'activité in vitro des plaquettes 7. Cet effet plus tard est important pour la santé cardiovasculaire en réduisant la probabilité que les plaquettes agrégats dans le sang, une des principales causes des crises cardiaques et strokes.8 Par conséquent, thiosulfinates trouvé dans l'oignon ont été montré inhiber in vitro des plaquettes aggregation9, 10.
Les flavonoïdes sont une seconde classe de composé améliorant la santé produite par les oignons, par exemple, est la quercétine. Les flavonoïdes sont des composés chimiques actifs contre les micro-organismes. Ils ont été trouvés in vitro comme substance antimicrobienne efficace contre un large éventail de micro-organismes 11 .Ginger, est constitué de racines fraîches ou séchées de Zingiber officinale. Chez l'homme, le gingembre est considéré agir directement sur le système gastro-intestinal pour réduire la nausée 12. Traditionnellement, le gingembre a été utilisé pour traiter les infections intestinales, en particulier celles liées à des problèmes digestifs. De même, son « pouvoir » anti-bactérien est efficace contre la prévention de nombreux problèmes intestinaux qui se produisent en raison de l'altération de la flore intestinale. Ceci est idéal pour éviter la formation d'ulcères en éliminant l'Helicobacter pylori. une bactérie dont les sécrétions d'ammoniac sont responsables de nombreux ulcères, en particulier ceux de la duodene, et pour d'autres problèmes d'estomac comme la gastrite, car la plante est capable de neutraliser l'excès d'acide gastrique qui est une autre des causes qui favorise la formation d'ulcères 5.
Le genre Salmonella est parmi les causes les plus communes de maladies infectieuses d'origine alimentaire et de l'eau dans le world15. L'organisme dispose d'une large gamme d'hôte qui comprend la plupart des espèces animales, y compris les mammifères, les oiseaux et les animaux à sang froid, en plus de l'homme. Un certain nombre d'études au Nigeria ont montré que les infections à Salmonella est endémique dans de nombreuses régions du pays16, 17 et ses augmentations de endémicité en particulier dans les zones à faible hygiene18 de l'environnement, 19, 20, 21.
Bacillus subtilis a été impliquée dans divers aliments, y compris la détérioration des ropiness dans le pain, la production de CO2 dans les viandes en conserve, sliminess et la coagulation dans le lait, e.t.c.22.
Escherichia coli est l'une des causes principales des deux infections nosocomiales et communautaires chez l'homme et l'un des micro-organismes les plus fréquemment isolés à partir du sang. E. coli chez l'homme est un habitant commun du tractus gastro-intestinal. Il peut également causer divers diseases23 intestinaux et extra-intestinaux .Les isolats pathogènes de E. coli ont un potentiel relativement important pour le développement resistance24, 25. La propagation de la résistance aux médicaments antimicrobiens est un défi mondial de la santé publique, ce qui nuit à l'efficacité des agents antimicrobiens et les résultats du taux importants de mortalité et les maladies ont augmenté, par conséquent, ce travail a donc entrepris d'enquêter ainsi que d'authentifier les potentiels antimicrobiens des deux médicaments plants26, 27.
Matériaux et méthodes
Confirmation Organisme d'essai
Collecte et identification des matières végétales
Extraction des matières végétales
Extraction oignon
Les oignons ont été lavés avec de l'eau distillée stérile propre et permis sécher à l'air pendant une heure. L'enveloppe extérieure de l'oignon ont été décollée manuellement. Les bulbes d'oignon étant séparées ont été lavées et extraites par les moyens suivants:
Exactement 200g de bulbes d'oignons frais ont été mélangés en une poudre fine et trempés dans 100 ml d'eau distillée pendant 24 heures. La pâte obtenue a été laissée dans un récipient en verre propre et stérile et on l'agite vigoureusement pour permettre une bonne extraction et il a été filtré en utilisant une mousseline stérile après quoi l'extrait a été obtenu, séché à l'air et stockées en dessous de la température ambiante jusqu'à utilisation.
Exactement 200g de bulbes d'oignons frais ont été mélangés et trempés dans 100 ml d'eau chaude pendant 24 heures; le jus résultant a été extrait, séché à l'air et stockés comme dans (1) ci-dessus.
Exactement 200g de bulbes d'oignons frais ont été mélangés et trempés dans 100 ml d'éthanol à 95% pendant 24 heures et l'extrait a été obtenu, séché à l'air et stockés comme dans (1) ci-dessus.
Exactement 200g de bulbes d'oignons frais ont été mélangés et le jus brut a été extrait après avoir reposé dans un verre propre contenu pendant 24 heures, il a été extrait en utilisant un tissu de mousseline stérile et l'extrait a été et stocké comme en (1) ci-dessus séché à l'air.
Extraction Ginger
Le rhizome de gingembre ont été lavés avec de l'eau distillée stérile propre et permis sécher à l'air pendant une heure. Ensuite, le revêtement externe du gingembre ont été décollée manuellement et le gingembre a été de nouveau lavée et extraite à l'aide des procédures suivantes:
Exactement 200g de gingembre frais ont été mélangés en une poudre fine et trempés dans 100 ml d'eau distillée pendant 24 heures. La pâte obtenue a été laissée dans un récipient en verre propre et stérile et on l'agite vigoureusement pour permettre une bonne extraction et il a été filtré en utilisant une mousseline stérile après quoi l'extrait a été obtenu, séché à l'air et stockées en dessous de la température ambiante jusqu'à utilisation.
Exactement 200g de gingembre frais ont été mélangés et trempés dans 100 ml d'eau chaude pendant 24 heures; le jus résultant a été extrait, séché à l'air et stockés comme dans (1) ci-dessus.
Exactement 200g de gingembre frais ont été mélangés et trempés dans 100 ml d'éthanol à 95% pendant 24 heures et l'extrait a été obtenu, séché à l'air et stockés comme dans (1) ci-dessus.
Exactement 200g de gingembre frais ont été mélangés et le jus brut a été extrait après avoir reposé dans un verre propre contenu pendant 24 heures, il a été extrait en utilisant un tissu de mousseline stérile et l'extrait a été stocké et comme en (1) ci-dessus séché à l'air.
Préparation de McFarland standard
Exactement 0,5 standard de turbidité McFarland équivalent a été préparé en ajoutant 0,6 ml de solution à 1% de chlorure de baryum (BaCl2. 2H2O) à 99.4ml de solution à 1% d'acide sulfurique (H2SO4) et on mélange soigneusement. Un petit volume de la solution trouble a été transféré au tube bouché du même type qui a été utilisé pour préparer les inoculums d'essai et de contrôle. Cela a été ensuite stocké dans l'obscurité à la température ambiante (25 ° C). Exactement 0,5 McFarland donne une densité approximative équivalente de bactéries 1x10 -8 cfu28.
Préparation inoculant par colonie directe Méthode de suspension
Un petit volume d'eau stérile a été versé dans un tube d'essai auquel colonies générales des organismes d'essai, prises directement à partir de la plaque ont été émulsionnés et la suspension a été ajustée pour correspondre à la norme 0.5 de McFarland qui a une apparence similaire d'une culture de bouillon pendant la nuit par ajoutant water29 distillée.
Test de dépistage antimicrobien
La sensibilité des organismes d'essai, Escherichia coli, Salmonella typhi et de Bacillus subtilis aux extraits d'Allium cepa (oignon) et Zingiber officinale (gingembre) ont été réalisées en utilisant la méthode de diffusion de coupelle plaque comme décrit by30. Un compte-gouttes en verre a été utilisé pour ajouter 0.02mls de la suspension à un support déjà préparé. Un coton-tige stérile a été utilisé pour diffuser en striant les organismes sur toute la surface du milieu et on laisse sécher pendant environ 5 minutes. Coupes de 6 mm de diamètre ont été réalisés dans l'agar-agar en utilisant perce-bouchon stérile.
Les différentes dilutions des extraits de plantes préparés dans l'ordre de -1. 0.1gmI 0.2gmI -1. 0.4gmI -1. 0.6gml -1 et -1 respectivement 0.8gml ont été préparés dans cinq tubes à essai différents et placés dans un portoir de tubes à essai. A propos de 0.3gml -1 de érythromycine a également été préparé le long du côté, qui a servi de contrôle positif. Exactement 0,02 ml de chaque concentration a été introduit dans chaque trou sur le support et on laisse reposer sur le banc pendant environ une heure pour une bonne diffusion. Il a été ensuite mis en incubation à 37 ° C pendant 24 heures. Les bactéries sensibles ont augmenté partout sauf dans les zones autour des trous dans le milieu. Ensuite, les zones d'inhibition résultantes obtenues ont été mesurées en millimètres et enregistrées par rapport aux concentrations correspondantes.
Les résultats des propriétés antimicrobiennes des extraits sur les organismes d'essai sont présentés dans les tableaux ci-dessous:
Discussion
Il était clair de ce travail que le solvant d'extraction a affecté le degré d'activité antibactérienne des extraits. Il a été observé que l'extrait éthanolique de gingembre a donné la plus grande zone d'inhibition (20 mm) en utilisant la concentration de 0.8gml -1 alors que l'extrait éthanolique de l'oignon a 9 mm avec 0.8mgl -1 chacun contre Salmonella typhi. Ce crédit à l'extraction de l'éthanol a été supposé éthanol étant un solvant organique et se dissout mieux les composés organiques, par conséquent, libérer le composant actif nécessaire pour activité11 antimicrobienne.
Les références
Informations Auteur
Nelson C. Azu, M. Sc
Département de microbiologie appliquée, Ebonyi State University